MouseOx小動物脈搏

一代的光學法，全程測量的方式，可應用與清醒自由活動狀態(tài)下的小動物脈搏血氧測量。廣泛應用于用于心血管研究，糖尿病，高血壓，腎臟疾病等領域的研究。

血氧飽和度（SpO2）是血液中被氧結合的氧合血紅蛋白的容量占全部可結合的血紅蛋白容量的百分比，也就是血液中血氧的濃度，它是呼吸循環(huán)的重要生理參數(shù)。血氧飽和度能夠反映出動物呼吸系統(tǒng)以及心血管的健康程度，在臨床動物疾病預防與診斷中起著重要的作用，同時也在研究心臟，肺，血液和血管疾病或者藥物測試中有廣泛的應用。

MouseOx® Plus脈搏僅需一個探頭便可監(jiān)測多種參數(shù)，具有多種型號傳感器適用于新生鼠至成年大鼠，并且擁有核磁兼容型傳感器，提供核磁成像期間小動物的生理指標監(jiān)測對于清醒狀態(tài)下大小鼠生理參數(shù)測量，配備有專業(yè)清醒活動籠子，旋轉支架和杠桿臂、低扭矩滑環(huán)，低應力環(huán)境，軟件有專門的清醒模式，其包括增強的過濾器和控制算法，允許儀器能夠更為準確監(jiān)測清醒活動狀態(tài)下小動物的心率、飽和度（Sp02）、呼吸頻率、呼吸幅度和脈搏幅度，并提供受試者活動測量，有利于提供更準確的數(shù)據(jù)，同時可選配多通道數(shù)據(jù)采集器，可進行多達8-16個動物同時監(jiān)測，配備專業(yè)軟件，可在軟件上顯示小動物的所有生理參數(shù)，還可選配為帶有體溫信號監(jiān)測接口的8通道數(shù)據(jù)采集器，配合軟件體溫模塊，允許研究人員連接溫度傳感器監(jiān)測小動物的體溫。

軟件具有標準模式與高級模式，可設置參數(shù)上下限報于監(jiān)測動物的異常生理參數(shù)，其中高級模式能夠在監(jiān)測監(jiān)測頁面實時觀察生理參數(shù)數(shù)據(jù)波形。軟件支持數(shù)據(jù)實時監(jiān)測與數(shù)據(jù)回演與導出，可長時間對動物進行觀察監(jiān)測。

所有測量都是通過一個的感應器完成，準確、方便、高效。

型號：MouseOx   品牌：Starr    正在對麻醉狀態(tài)下的小鼠進行測試

優(yōu)勢特點：

傳統(tǒng)的血氧飽和度檢測方法是先采血，再利用進行電化學分析測出血氧分壓PO2然后計算出血氧濃度，此種方法比較麻煩，需要專業(yè)人士進行操作，且不能進行連續(xù)檢測。而血氧采用PPG技術，專門主要對Hb和HbO2的濃度變化進行檢測，時間響應快，可做到動態(tài)實時監(jiān)測，裝置更小，整個系統(tǒng)便于移動和臨床監(jiān)測，且兩者具有很好的線性關系。

MouseOx® Plus脈搏是一代的光學法，全程測量的方式，和傳統(tǒng)有創(chuàng)的測量方式相比，準確性高，重復性和穩(wěn)定性好，僅需一個探頭便可監(jiān)測包含脈搏血氧在內(nèi)的多種參數(shù)，能夠對正常生理活動狀態(tài)下的清醒動物進行監(jiān)測。

• 適用于小鼠、新生大鼠、大鼠的血氧測量，監(jiān)測心率范圍90 ~ 900 BPM
• 可測量多達7個生理參數(shù)：脈搏血氧、心率、脈搏頻率、脈搏幅度、呼吸頻率、呼吸幅度、體溫。
• 傳感器位置根據(jù)實驗的應用和需要，可選擇足部、大腿、頸部和喉嚨等傳感器
• 采用光電傳感技術測量原理，適用于麻醉、清醒以及MRI環(huán)境的動物血壓測量
• 高通量設計，一次可監(jiān)控多達16個動物
• 輸出原始脈沖波形，可輸入到其他數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)中進行數(shù)據(jù)分析
• 參數(shù)報警功能。在監(jiān)測生命體征的同時設置警報，以確保受試者的安全
• 具有有兩種通信方式，可通過U盤導出數(shù)據(jù)，也可連接電腦進行實時控制及數(shù)據(jù)傳輸
• 可連續(xù)監(jiān)測、重復檢測，準確性高，重復性和穩(wěn)定性好

應用領域：

MouseOx® Plus脈搏在研究心臟，肺，血液和血管疾病或者藥物測試中有廣泛的應用。目前已廣泛應用于以下方面：
動物手術過程中生命體征的監(jiān)護：確保適當?shù)穆樽砩疃取㈩A防手術中缺氧、邊觀察邊控制呼吸量、邊觀察邊調(diào)整氧氣量 

轉化醫(yī)學研究：流感，肺炎，呼吸道合胞病毒和其它急性呼吸道疾病；肺損傷、肺癌、COPD、睡眠呼吸暫停及其他慢性呼吸道疾病；休克動物模型；中風和腦損傷；高血壓、低血壓和其他心血管疾病；缺氧&吸入研究；手術期間、麻醉狀態(tài)、活體成像過程中生命體征監(jiān)測；藥理學和毒理學研究

有多種探頭可供選擇：

· 根據(jù)實驗需求：可選擇大鼠型探頭、小鼠型探頭；

· 根據(jù)動物狀態(tài)：可選擇清醒活動狀態(tài)連續(xù)測量和麻醉（或手術）狀態(tài)測量探頭；

· 根據(jù)動物數(shù)量：有多通道適配器可供選擇，同時檢測多只動物的生命體征；

· 根據(jù)使用環(huán)境：可選擇核磁環(huán)境適用的無磁探頭；

  

主要功能：

· 小動物手術術中監(jiān)測(保證適當?shù)穆樽砩疃龋乐故中g中缺氧)

· 一個傳感器獲得多個生命信號 (動脈血氧飽和度，心率，呼吸頻率，脈搏幅度，呼吸幅度)

· 心肺功能參數(shù)記錄

· 輸出模擬數(shù)據(jù)

型號規(guī)格：

麻醉配置
MouseOxPlus主機與配套線纜
大腿傳感器
足部傳感器
溫度傳感器（選配）
高級軟件（帶密鑰）

清醒配置
MouseOxPlus主機與配套線纜
轉向器與平衡臂固定支架
小鼠頸部傳感器
大鼠頸部傳感器
溫度傳感器（選配）
國產(chǎn)清醒活動籠
高級軟件（含產(chǎn)品密鑰）

進口清醒活動籠（可根據(jù)需求選配）
小鼠進口清醒活動籠
大鼠進口清醒活動籠

（另有多通道配置，更多適用與足、腿或喉部等不同規(guī)格型號傳感器，MRI兼容型傳感器，詳情可咨詢玉研儀器！）

。     

      

         

經(jīng)過驗證的準確度:

使用有創(chuàng)血氣采樣測量結果與 MouseOx 測量結果的比較， 對比表明， 兩者具有很好的線性關系。

脈搏、血氧、呼吸等心肺監(jiān)測參數(shù):

· 脈波頻率在90到900BPM范圍內(nèi)監(jiān)測 (每分鐘心跳, Beat per minutes, BPM)

· 血氧飽和度監(jiān)測范圍：0% 到99% 動脈血氧飽和度；

· 血氧飽和度監(jiān)測誤差：<1.5% 橫跨整個監(jiān)測范圍；

· 血氧飽和度監(jiān)測反應時間：實時報告動脈血氧飽和度, 在每次心跳以后0.72秒屏幕刷新；

· 呼吸頻率監(jiān)測范圍：每分鐘 25到450 次；

· 監(jiān)測反應時間：呼吸率每1.7秒向用戶報告, 移動報告的值是10次呼吸的的平均數(shù)；

· 傷監(jiān)測脈搏充盈度以估量血流量的變化；

· 脈搏監(jiān)測范圍：內(nèi)徑0到800微米的徽小血管；

· 監(jiān)測誤差：< 2.4%橫跨整個監(jiān)測范圍；

· 監(jiān)測反應時間：脈搏充盈度實時向用戶報告, 在每次心跳以后,0.72秒屏幕刷新，刷新屏幕顯示被測量的所有脈搏充盈度；

· 傷監(jiān)測動物呼吸幅度的變化；

· 呼吸幅度監(jiān)測范圍：每分鐘25到450次；

· 呼吸幅度監(jiān)測反應時間：呼吸率每1.7秒向用戶報告, 移動報告的值是10次呼吸的的平均數(shù)；

血氧呼吸數(shù)據(jù)采集器：

8通道數(shù)據(jù)采集器

· 可對1-8只老鼠進行脈搏、血氧、呼吸的數(shù)據(jù)測量

模擬信號輸出模塊：

搭配模擬信號輸出模塊實時輸出模擬心博：

多鐘測試探頭可選：

根據(jù)需要，可選擇老鼠清醒狀態(tài)下使用的頸部探頭，麻醉狀態(tài)下使用的足部探頭和大腿探頭

小鼠腿部

  

小鼠頸部

  

大鼠足部

  

新生鼠

磁共振適用模塊及探頭

設備正在對清醒活動狀態(tài)的大鼠進行長時間、持續(xù)的數(shù)據(jù)采集

測量軟件：

實時顯示監(jiān)測數(shù)據(jù)，具有診斷模式，具備報價功能，數(shù)據(jù)可儲存為Text貨Windaq格式

玉研儀器是美國STARR公司的中國代理，美國Starr公司的Mouseox是專門應用于小鼠和大鼠的監(jiān)護儀，可以測量脈搏血氧，呼吸，心率，脈搏幅度，呼吸幅度，體溫等參數(shù)。詳情請!

參考文獻：

1.Suzuki R, Yamasoba D, Kimura I, et al. Attenuated fusogenicity and pathogenicity of SARS-CoV-2 Omicron variant[J]. Nature, 2022, 603(7902): 700-705.
2.Wang G, Wen B, Deng Z, et al. Endothelial progenitor cells stimulate neonatal lung angiogenesis through FOXF1-mediated activation of BMP9/ACVRL1 signaling[J]. Nature communications, 2022, 13(1): 1-16.
3.Aiba I, Noebels J L. Kcnq2/Kv7. 2 controls the threshold and bi-hemispheric symmetry of cortical spreading depolarization[J]. Brain, 2021, 144(9): 2863-2878.
4.Bachus H, Kaur K, Papillion A M, et al. Impaired tumor-necrosis-factor-α-driven dendritic cell activation limits lipopolysaccharide-induced protection from allergic inflammation in infants[J]. Immunity, 2019, 50(1): 225-240. e4.
5.Han W, Tellez L A, Perkins M H, et al. A neural circuit for gut-induced reward[J]. Cell, 2018, 175(3): 665-678. e23.
6.Lai A Y, Dorr A, Thomason L A M, et al. Venular degeneration leads to vascular dysfunction in a transgenic model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2015, 138(4): 1046-1058.
7.Thomas G M, Carbo C, Curtis B R, et al. Extracellular DNA traps are associated with the pathogenesis of TRALI in humans and mice[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2012, 119(26): 6335-6343.
8.Dorr A, Sahota B, Chinta L V, et al. Amyloid-β-dependent compromise of microvascular structure and function in a model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2012, 135(10): 3039-3050.
9.Abt M C, Osborne L C, Monticelli L A, et al. Commensal bacteria calibrate the activation threshold of innate antiviral immunity[J]. Immunity, 2012, 37(1): 158-170.
Fung Y L, Kim M, Tabuchi A, et al. Recipient T lymphocytes modulate the severity of antibody-mediated transfusion-related acute lung injury[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2010, 116(16): 3073-3079.

    

    

    ：，

         

    ：3170965962

    yuyanbio

    ：yuyanbio