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    全身體積描記器/

    • 更新時間:2024-10-11
    • 訪  問  量:1648

    簡要描述:全身體積描記器(肺功能檢測系統)用于動物在清醒、無束縛狀態下,測量動物的各項肺功能參數

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    產品詳情

    全身體積描記器(肺功能檢測系統)用于動物在清醒、無束縛狀態下,測量動物的各項肺功能參數。該系統簡單、易用、快速、數據輸出量大的特點使其成為國外藥企研發機構喜愛的研究工具,主要用于哮喘等新藥研發過程中進行粗篩實驗。其指標參數能夠良好地反映動物對藥物產生的氣道高反應情況,適合于需要動物在自然的狀態下呼吸的研究以及長期跟蹤實驗。


    每個體描箱都具備霧化攻擊、溫濕度補償接口,另外還具有供水接口和氣體采樣接口以適用于各種特殊需要的研究。



    WBP全身體積描記器的主要工作原理:

    WBP主要檢測由動物鼻部氣流和胸腹呼吸運動引起的氣流變化導致的"box flow"數據變化,并參考溫度、濕度和壓力的數據計算得出各種指標參數。


    將乙酰甲(methacholine,Mch)或生理鹽水(NS)等通過霧化器霧化入體描箱內,箱內動物吸入霧化氣體后呼吸運動的改變引起箱內壓力、流量產出相應的變化,連接于體描箱的壓力傳感器(流量傳感器)將采集到的信號傳至信號處理系統,并在信號放大器作用下轉化為呼吸動力學各指標值。


    全身體積描記系統可同時連接6個體描箱,相應的傳感器可以將各個箱內壓力、流量的變化同步傳至信號處理系統處理,因此可以同步為多只實驗動物進行肺功能檢測。




    型號:WBP


    小動物全身體積描記器的主要特點:

    · 適用于小鼠、大鼠、豚鼠(可定做猴子、比格犬等大動物型)

    · 無需手術,動物處于清醒的自由活動狀態;

    · 實時監測潮氣量,并有多個因素補償(如Epstein & Epstein, Drorbaugh & Fenn)

    · 數據結果不受麻醉和身體創傷的副作用影響;

    · 實時環境監測(氣壓、溫度、濕度)

    · 可長達數月對同一只動物重復實驗,是長期跟蹤研究的理想方式;

    · 允許單一實驗持續數小時至數天;

    · 可同時對6只動物進行檢測,是進行篩選實驗的良好選擇;

    · 可進行霧化給藥(氣霧攻擊);

    · 實驗操作簡單易行;

    · 可靈活與其它實驗設備或方法聯合使用


    全身體積描記器的主要應用方向:

    · 氣道高反應模型Airway hyper-reactivity models

    · 遲發相反應研究(late phase response,LPR) Late phase response studies

    · 慢性疾病研究Chronic studies

    · 藥物篩選Drug screening

    · 毒理學Toxicology



    分析軟件:








    搭配不同的適配器可用于檢測不同的動物:



    小鼠體積描計器



    大鼠體積描計器 




    豚鼠體積描計器


    猴子體積描計器


    如需檢測更多肺功能參數,可選擇:

    多參數肺功能檢測系統




    如需檢測小動物的氣道阻力,可選擇:

    四通道氣道阻力和肺順應性檢測系統


    小動物肺功能測量儀相關文獻:
    1.Pinart M, Hussain F, Shirali S, et al. Role of mitogen-activated protein kinase phosphatase-1 in corticosteroid insensitivity of chronic oxidant lung injury[J]. European journal of pharmacology, 2014, 744: 108-114.
    2.Oyamada Y, Murai M, Harada N, et al. Age-dependent involvement of ATP-sensitive potassium channel Kir6. 2 in hypoxic ventilatory depression of mouse[J]. Respiratory physiology & neurobiology, 2008, 162(1): 80-84.
    3.H?kansson H F, Smailagic A, Brunmark C, et al. Altered lung function relates to inflammation in an acute LPS mouse model[J]. Pulmonary pharmacology & therapeutics, 2012, 25(5): 399-406.
    4.Nelson M, Lever M S, Dean R E, et al. Bioavailability and efficacy of levofloxacin against Francisella tularensis in the common marmoset (Callithrix jacchus)[J]. Antimicrobial agents and chemotherapy, 2010, 54(9): 3922-3926.
    5.McGonigal R, Cunningham M E, Yao D, et al. C1q-targeted inhibition of the classical complement pathway prevents injury in a novel mouse model of acute motor axonal neuropathy[J]. Acta neuropathologica communications, 2016, 4(1): 1-16.
    6.Ra?id O, Chirita D, Iancu A D, et al. Assessment of routine procedure effect on breathing parameters in mice by using whole-body plethysmography[J]. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 2012, 51(4): 469-474.
    7.Halstead S K, Zitman F M P, Humphreys P D, et al. Eculizumab prevents anti-ganglioside antibody-mediated neuropathy in a murine model[J]. Brain, 2008, 131(5): 1197-1208.
    8.Séi H. Blood pressure surges in REM sleep: A mini review[J]. Pathophysiology, 2012, 19(4): 233-241.
    9.Nelson M, Lever M S, Dean R E, et al. Characterization of lethal inhalational infection with Francisella tularensis in the common marmoset (Callithrix jacchus)[J]. Journal of medical microbiology, 2010, 59(Pt 9): 1107.
    10.Halstead S K, Zitman F M P, Humphreys P D, et al. Eculizumab prevents anti-ganglioside antibody-mediated neuropathy in a murine model[J]. Brain, 2008, 131(5): 1197-1208.
    11.Hur G Y, Lee S Y, Lee S H, et al. Potential use of an anticancer drug gefinitib, an EGFR inhibitor, on allergic airway inflammation[J]. Experimental & molecular medicine, 2007, 39(3): 367-375.



        

        

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